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基于光学传感和微流控芯片电泳检测博来霉素、S1酶和γ-干扰素的新方法研究

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基于光学传感和微流控芯片电泳检测博来霉素、S1酶和γ-干扰素的新方法研究
论文目录
 
中文摘要第1-5页
Abstract第5-12页
第一章 绪论第12-44页
  1.1 引言第12页
  1.2 光学生物传感分析第12-17页
    1.2.1 荧光传感分析第12-14页
    1.2.2 比色传感分析第14-16页
      1.2.2.1 基于贵金属纳米粒子表面等离子体共振构建的比色传感体系第14-15页
      1.2.2.2 基于ABTS-H_2O_2反应构建的比色传感体系第15-16页
    1.2.3 其他光学传感体系第16-17页
  1.3 类石墨烯二维层状纳米材料在光学生物传感分析中的应用第17-19页
  1.4 微流控芯片技术第19-30页
    1.4.1 微流控芯片检测方法第19-20页
    1.4.2 微流控芯片技术在生化分析中的应用第20-27页
      1.4.2.1 微流控芯片技术在蛋白质分析中的应用第20-22页
      1.4.2.2 微流控芯片技术在核酸分析中的应用第22-23页
      1.4.2.3 微流控芯片技术在药物分析和筛选中的应用第23-25页
      1.4.2.4 微流控芯片技术在细胞分析中的应用第25-26页
      1.4.2.5 微流控芯片技术在其他物质分析中的应用第26-27页
    1.4.3 信号放大技术在微流控芯片技术中的应用第27-30页
      1.4.3.1 基于纳米材料的信号放大技术在微流控芯片技术中的应用第27-28页
      1.4.3.2 基于核酸的信号放大技术在微流控芯片技术中的应用第28-30页
  1.5 本论文的主要研究工作第30-31页
参考文献第31-44页
第二章 基于二硫化钨纳米片的荧光猝灭平台用于博来霉素和S1核酸酶活性的检测第44-65页
  2.1 引言第44-45页
  2.2 实验部分第45-47页
    2.2.1 主要仪器与试剂第45-46页
    2.2.2 溶液配制第46页
    2.2.3 博来霉素的检测第46页
    2.2.4 S1核酸酶的检测第46-47页
  2.3 结果与讨论第47-61页
    2.3.1 方法设计及实验原理第47页
    2.3.2 二硫化钨纳米片和氧化石墨烯对F-ssDNA猝灭能力差别的验证第47-48页
    2.3.3 可行性实验第48-49页
    2.3.4 博来霉素检测条件的优化第49-52页
      2.3.4.1 二硫化钨纳米片用量的优化第50页
      2.3.4.2 二硫化钨纳米片猝灭动力学研究第50-51页
      2.3.4.3 裂解反应时间的优化第51-52页
      2.3.4.4 不同金属离子对博来霉素检测活性的影响第52页
    2.3.5 S1酶检测条件的优化第52-54页
      2.3.5.1 二硫化钨纳米片用量的优化第52-53页
      2.3.5.2 酶水解反应时间的优化第53-54页
    2.3.6 博来霉素的检测第54-56页
    2.3.7 S1酶的检测第56-58页
    2.3.8 特异性分析第58-60页
      2.3.8.1 博来霉素检测的特异性分析第58-59页
      2.3.8.2 S1酶检测的特异性分析第59-60页
    2.3.9 人血清样品分析第60-61页
  2.4 结论第61页
参考文献第61-65页
第三章 基于博来霉素增强Fe(Ⅱ)-H_2O_2-ABTS反应比色法检测博来霉素第65-77页
  3.1 引言第65页
  3.2 实验部分第65-66页
    3.2.1 主要仪器与试剂第65-66页
    3.2.2 溶液配制第66页
    3.2.3 人血清样品的预处理第66页
    3.2.4 博来霉素的检测第66页
    3.2.5 吸光度测定第66页
  3.3 结果与讨论第66-74页
    3.3.1 方法设计及实验原理第66-67页
    3.3.2 可行性实验第67-69页
    3.3.3 实验条件的优化第69-71页
      3.3.3.1 pH的优化第69-70页
      3.3.3.2 温度和时间的优化第70-71页
      3.3.3.3 不同金属离子对博来霉素检测活性的影响第71页
    3.3.4 校准曲线、线性范围、灵敏度第71-73页
    3.3.5 特异性分析第73页
    3.3.6 人血清样品分析第73-74页
  3.4 结论第74页
参考文献第74-77页
第四章 基于微流控芯片激光诱导荧光平台高灵敏检测S1核酸酶活性和抑制剂第77-94页
  4.1 引言第77页
  4.2 实验部分第77-79页
    4.2.1 仪器第77-78页
    4.2.2 试剂与溶液第78-79页
    4.2.3 样品制备第79页
    4.2.4 微芯片电泳过程第79页
  4.3 结果与讨论第79-89页
    4.3.1 原理设计第79-80页
    4.3.2 电泳分离条件的优化第80-83页
      4.3.2.1 分离电压的影响第80-81页
      4.3.2.2 电泳缓冲溶液pH的影响第81-82页
      4.3.2.3 电泳缓冲介质浓度对分离的影响第82页
      4.3.2.4 SDS浓度对分离的影响第82-83页
    4.3.3 酶水解反应时间的优化第83-84页
    4.3.4 实验条件的确定第84页
    4.3.5 S1核酸酶活性检测第84页
    4.3.6 线性范围、检测限和精密度考察第84-86页
    4.3.7 S1酶抑制剂的考察第86-87页
    4.3.8 特异性分析第87-88页
    4.3.9 人血清样品分析第88-89页
  4.4 结论第89页
参考文献第89-94页
第五章 基于T7核酸外切酶信号放大微流控芯片电泳激光诱导荧光检测人血浆中的IFN-γ第94-110页
  5.1 引言第94-95页
  5.2 实验部分第95-96页
    5.2.1 主要仪器第95页
    5.2.2 试剂与溶液第95页
    5.2.3 样品制备第95-96页
    5.2.4 微芯片电泳过程第96页
    5.2.5 凝胶电泳试验第96页
  5.3 结果与讨论第96-106页
    5.3.1 方法设计及实验原理第96-97页
    5.3.2 琼脂糖凝胶电泳表征第97-98页
    5.3.3 电泳分离条件的优化第98-101页
      5.3.3.1 分离电压的影响第98-99页
      5.3.3.2 电泳缓冲溶液pH的影响第99-100页
      5.3.3.3 电泳缓冲介质浓度对分离的影响第100-101页
      5.3.3.4 SDS浓度对分离的影响第101页
    5.3.4 T7 Exo用量的优化第101页
    5.3.5 反应时间的优化第101-102页
    5.3.6 实验条件的确定第102页
    5.3.7 IFN-γ标准样品分析第102-104页
    5.3.8 线性范围、检测限和精密度考察第104页
    5.3.9 特异性分析第104-105页
    5.3.10 人血浆中IFN-γ的测定第105-106页
  5.4 结论第106页
参考文献第106-110页
攻读硕士学位期间已发表的论文第110-111页
致谢第111-112页

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